DIAGNÓSTICO DE CETOSIS
MEDIANTE EL USO DE MUESTRAS DE SANGRE, ORINA Y LECHE
Autor/es: Luis Gabriel Cucunubo 1 , Clarissa Strieder-Barboza 2 , Fernando Wittwer 3 y Mirela Noro 3* 1Departamento de Salud Animal, FMVZ, Universidad de Tolima, Ibagué, Colombia. 2Grupo de Investigación en Nutrición, Toxicología y Reproducción Animal, FMVZ, Universidad Cooperativa de Colombia, Bucaramanga, Colombia. 3Inst. Cs. Clín. Vet, Universidad Austral de Chile, Valdivia, Chile, FMVZ
Resumen
El objetivo de este trabajo fue comparar y asociar la presentación de cetosis subclínica y balance energético negativo (BEN), diagnosticados mediante las concentraciones de – hidroxibutirato (βHB) plasmático, con indicadores sanguíneos, urinarios y lácteos de energía en vacas lecheras.
Autor/es: Luis Gabriel Cucunubo 1 , Clarissa Strieder-Barboza 2 , Fernando Wittwer 3 y Mirela Noro 3* 1Departamento de Salud Animal, FMVZ, Universidad de Tolima, Ibagué, Colombia. 2Grupo de Investigación en Nutrición, Toxicología y Reproducción Animal, FMVZ, Universidad Cooperativa de Colombia, Bucaramanga, Colombia. 3Inst. Cs. Clín. Vet, Universidad Austral de Chile, Valdivia, Chile, FMVZ
Setenta y cuatro vacas Holstein- Friesian fueron empleadas desde la tercera semana preparto hasta la octava posparto, obteniéndose muestras de plasma, orina y leche semanalmente; en plasma se determinó las concentraciones de βHB, ácidos grasos no esterificados (NEFA) y glucosa; en orina se realizó la prueba de Rothera y se determinó la excreción de βHB y el pH; en leche se determinó el contenido de grasa y proteína. Se consideró como puntos de corte para cetosis βHB >1,0 >1,2 y >1,4 mmol/L y para la presentación de BEN cuando NEFA >300 μmol/L en preparto y βHB >0,6 mmol/L en el posparto. La intensidad de la reacción de la prueba de Rothera y la concentración de βHB urinario se relacionaron con las concentraciones de βHB plasmático (r=0,57, P<0,05 y r= 0,42, P<0,05, respectivamente). La prueba de Rothera se asoció con los distintos puntos de corte de cetosis (P<0,05), así como con BEN (P<0,05). La concentración plasmática de βHB presentó una asociación leve (P<0,05) con NEFA y glucosa y nula (P>0,05) con los indicadores lácteos y el pH urinario. Se concluye que las reacciones leve y moderada de la prueba de Rothera en orina son indicadores de BEN, mientras que las reacciones moderada e intensa son indicadoras de cetosis subclínica.
INTRODUCCIÓN
Las vacas lecheras (Bos taurus), desde el periodo preparto hasta la octava semana posparto presentan balance energético negativo (BEN) debido a la disminución del consumo de materia seca en el preparto y al incremento en la demanda energé- tica para la producción de leche en el posparto, que conlleva a una movilización lipídica para suplir sus requerimientos energéticos [11]. La movilización lipídica incrementa la concentración plasmática de los ácidos grasos no esterificados (NEFA), los cuales son trasportados al hígado para su esterificación o producción de triacilgliceroles. Sin embargo, está asociado a una mayor demanda de oxalacetato para la gluconeogénesis durante el BEN, hay un mayor ingreso de NEFA a la mitocondria para producir cuerpos cetónicos, β-hidroxibutirato (βHB), acetoacetato (AcAc) y acetona (Ac), los cuales son una fuente de energía en los bovinos adultos. A su vez, cuando su producción excede la capacidad del organismo para utilizarlos, sus concentraciones se incrementan produciendo cetosis [17].
La cetosis es una enfermedad metabólica que afecta principalmente a vacas lecheras de alta producción, entre la 2da y 8va semana posparto. Se caracteriza por disminución en la glucemia y aumento de la concentración de los cuerpos cetónicos en los tejidos y fluidos orgánicos [5]. La cetosis, en sus formas clínica y subclínica es una de las enfermedades metabólicas más frecuentes en los rebaños lecheros generando un impacto negativo debido al costo de tratamiento, merma en la producción de leche y mayor incidencia de enfermedades y problemas reproductivos [14].
La cetosis subclínica se caracteriza por presentar concentraciones plasmáticas deβHB mayores a 1,4 mmol/L, sin signos clínicos aparentes, por lo cual pasa desapercibida en los rebaños lecheros [3]. Se describe que, concentraciones plasmáticas ≥1,2 mmol/L incrementan en 4,7 veces la presentación de cetosis clínica [22], y que concentraciones ≥1,0 mmol/L en la primera semana posparto reduce en un 25% la tasa de preñez en la primera inseminación [26]. Por otro lado, las concentraciones de βHB plasmático 0,6 mmol/L son indicadoras de BEN en el rebaño [27].
La determinación de βHB plasmático es considerada la prueba de oro para el diagnóstico de cetosis subclínica [3, 15]; a su vez, existen otras pruebas diagnósticas como la de Rothera [3] que determina cuerpos cetónicos mediante la reacción de la Ac y AcAc con nitroprusiato de sodio. La prueba de Rothera en muestras de leche presenta una alta especificidad (98 al 100%) y una baja sensibilidad (5 al 44%), al utilizar como punto de corte la concentración de βHB plasmático 1,4 mmol/L [9]; por otro lado, utilizando muestras de orina con el mismo punto de corte, la misma prueba presenta una especificidad de 96 a 99% y un incremento en la sensibilidad (49 a 76 %) [3].
El monitoreo del balance energético con la determinación de la concentración plasmática NEFA, es otra herramienta diagnóstica de la movilización lipídica, desde el preparto [25] y para predecir el riesgo de presentación de cetosis subclínica [15], visto que concentraciones de NEFA mayores a 300 μmol/L en el preparto incrementan la presentación de cetosis en 3,6% [15]. Por otro lado, la determinación de la glucemia es otra forma de monitorear el BEN pero su sensibilidad es baja al presentar un fuerte control homeostático hormonal, el cual mantiene sus concentraciones sin cambios marcados [11].
La composición grasa y de proteínas de la leche, así como su razón (contenido de grasa: proteína, G:P láctea) son también indicadores del metabolismo energético [14]. La razón óptima G:P láctea varía de 1,0 a 1,25; vacas con valores de G:P láctea superiores a 1,5 al inicio de lactancia presentan mayor riesgo de cetosis [6].
El objetivo de este trabajo fue comparar y asociar la presentación de cetosis subclínica y BEN, diagnosticados mediante las concentraciones de βHB plasmático, con indicadores sanguíneos, urinarios y lácteos de energía en vacas lecheras.
MATERIALES Y MÉTODOS
Animales. Se utilizaron cincuenta y seis vacas multíparas y dieciocho primíparas Holstein-Friesian, desde la 3ra semana preparto hasta la 8va semana posparto, con partos distribuidos entre los meses de marzo a octubre del 2010. Los animales eran
parte del rebaño lechero de la unidad de predios experimentales de la Universidad Austral de Chile, ubicado en Valdivia, Región de los Ríos, Chile (39°48’30” LS y 73°14’30” LO), a una altura de 12 m.s.n.m, clima templado húmedo con influencia mediterránea, con una temperatura media anual de 12°C y una precipitación de 1.871 mm anual [4].
Dieta y manejo. En el preparto, las vacas se alimentaron en base a pastoreo de forraje verde (Lolium perenne) con una oferta máxima de 10 kg/MS/vaca/día (d), además de 2,5 kg/vaca/d de concentrado peletizado (afrecho de trigo [Triticum aestivum], melaza [Saccharum L.], lupino [Lupinus albus], maíz molido [Zea mays] y afrecho de raps [Brassica napus], 87% materia seca (MS), 18% proteína bruta (PB), 3 Mcal/kg energía metabolizable (EM), 25% fibra en detergente ácido (FDA)), 6 kg/vaca/d de heno (85,5% MS, 12,7% PB, 1,93 Mcal/kg EM, 50,7% fibra en detergente neutro (FDN), 33,5% FDA) y 600 g/vaca/d de una mezcla mineral con sales aniónicas (2,5%), suministrada 2 veces al d.
En el periodo de otoño e invierno, las vacas posparto pastorearon una pradera de Lolium perene (18,4% MS, 25,6% PB, 2,7 Mcal/kg EM, 41,2% FDN, 25,7% FDA, 2,7% extrato etéreo (EE), 10,2% cenizas totales (CT) 18,2 g/kg carbohidratos solubles (CHSO)) con una oferta aproximada de 17 kg MS/vaca/d y recibieron 35 kg/vaca/d de ensilaje de Lolium perenne (44,1% MS, 9,5% PB, 2,32 Mcal/kg EM 62,4% FDN, 38,3% FDA), además de 2 kg/vaca/d de torta de rap (90% MS, 34,5% PB, 3,25 Mcal/kg EM, 26,3% FDN,12,3% EE), 5 kg/vaca/d de maíz húmedo (70% MS, 7,7 PB, 3,52 Mcal/kg EM 10,8% FDN, 3% FDA), y 600 g de mezcla mineral con afrechillo de trigo en el patio de alimentación. En el periodo de primavera se ofertó aproximadamente 25 kg MS/vaca/d de Lolium perene (19,2% MS, 18,2% PB, 2,85 Mcal/kg EM, 38,8% FDN, 23,4% FDA, 2,4 % EE, 6,7% CT, 25,5 g/kg CHSO), más 3 kg/vaca/d de concentrado peletizado (86,7% MS, 14,1% PB, 2,98 Mcal/kg EM, 16,2% FDA, 5,2% FDA, 1,4% EE, 5,28 CT). Las vacas tuvieron libre acceso al agua y eran ordeñadas 2 veces al dia.
Muestreos y análisis. Semanalmente, desde la 3ra semana previa al parto hasta la 8va semana posparto se obtuvieron de cada vaca, muestras de orina (n= 800) por medio de estimulación subvulvar y de sangre heparinizada (n= 870) por punción de la vena coccígea, además de registrar la condición corporal (1,0= vaca flaca; 5,0= vaca obesa) [8]. En las muestras de orina se determinó, inmediatamente de las obtenidas el valor de pH mediante un pHmetro portátil (Checker 3, Hanna Instruments®, EUA) calibrado con solución buffer 9,0; 7,0 y 4,0; posteriormente se realizó la prueba de Rothera (0,2 mL de orina con 300 mg de reactivo Rothera) y se calificó la intensidad de la reacción como negativa (sin cambio de color); leve (color lila); moderada (color morado leve) e intensa (morado fuerte) (FIG. 1). Una alícuota de 1 mL de orina se centrifugó (Spectrafuge FM, Labnet International inc., EUA) a 14.300 g durante 5 minutos (min) y el sobrenadante se congeló a -20°C (Freezer 420, Consul®, CFC Free, Brasil) en microtubos, para posteriormente determinar la concentración de βHB (Ranbut®, Randox). Otra alícuota de las muestras de orina se diluyó en agua destilada (1:50) para determinar las concentraciones de creatinina (Human®) para el cálculo de la excreción urinaria de βHB corregida por creatinina (concentración deβHB urinaria/ concentración de creatinina urinaria).
ARTICULO COMPLETO DIAGNOSTICO DE CETOSIS SUBCLINICA Y BALANCE ENERGETICO NEGATIVO EN VACAS LECHERAS MEDIANTE EL USO DE MUESTRAS DE SANGRE, ORINA Y LECHE